Concours agro-véto
En construction….
Manipulations hors dissections animales :
Les protocoles sont indiqués.
Les figurés conventionnels pour l’interprétation des coupes d’organes végétaux (racine, tige et feuille) sont précisés dans les énoncés.
Des fiches techniques d’utilisation du matériel spécifique sont fournies.
Dessin, schéma ou graphe sont systématiquement demandés.
Exemples d’énoncés publiés dans les rapports du jury depuis 2015
Liste des exercices publiés dans le rapport du jury 2018 :
Elaboration d’un protocole pour répondre à un problème à partir d’une liste de matériel fournie
Suivi d’une réaction enzymatique (colorimétrie) : exemple d’exercices publiés
Détermination graphique des paramètres cinétiques d’enzymes michaeliennes avec ou sans inhibiteur compétitif ou non compétitif (sur papier millimétré ou avec un tableur) : exemple d’exercices publiés
Comparaison de sites actifs d’enzyme, représentation 3D d’une enzyme et fixation d’un ligand (substrat, inhibiteur) à l’aide d’un logiciel
Comparaison et analyse des différents niveaux de structure de protéines (avec ou sans ligand)
Exploitation de séquences alignées de protéines ou d’ADN à l’aide ou non d’un logiciel
Construction d’une matrice de distance à partir de l’étude de séquences
Construction d’un arbre de similitudes (méthode fournie)
Construction d’un cladogramme
Chromatographies sur papier ou sur plaque CCM : pigments d’« algues », pigments de la feuille d’épinard, pigments de pétales, glucides,…
Exploitation d’un chromatogramme
Utilisation d’un spectroscope
Électrophorèse de protéines (blanc d’œuf, sérum sanguin…)
Exploitation d’un électrophorégramme : exemple d’un exercice publié pour l’ADN
Construction d’une carte de restriction
Construction d’une pyramide des biomasses
Construction d’un réseau trophique
Analyse et exploitation de données quantitatives (production primaire nette, transferts de matière, temps de résidence…)
Calculs de volume, de surface, de densité, de taille en utilisant une échelle, calcul d’une échelle
Résolution d’un exercice de croisement (étude avec 2 gènes ayant chacun 2 allèles)
Etude quantitative d’une population en équilibre de Hardy-Weinberg ou non
Modélisations numériques (dérive génétique, sélection naturelle, dynamique de populations…) et interprétation
Analyse d’un caryotype
Réalisation d’un frottis bactérien et coloration (au bleu de méthylène ou coloration de Gram) à partir de cultures liquides, de yaourt, de nodosités etc
Détermination du potentiel hydrique d’un organe
Détermination de l’osmolarité de cellules
Réalisation de dilutions adaptées Comptage de microorganismes sur lame Kova
Exemples d’exercices de montages au microscope publiés
Montage d’épiderme d’oignon : plasmolyse/turgescence, mise en évidence de la vacuole ou d’acides nucléiques
Montage d’épiderme de limbe foliaire ou de fronde, de pétales
Montage permettant d’observer un mouvement cellulaire
Montage d’un jeune apex racinaire (cellules en mitose)
Montage microscopique des périthèces d’ascomycètes, de filaments mycéliens
Montage microscopique des sores du polypode
Observation et montage de cultures de paramécies, d’euglènes, de chlorelles, de Saccharomyces cerevisiae…
Montage de coupes de lichen
Analyse de préparations microscopiques de conceptacles de Fucus
Dissociation de cellules végétales et observation microscopique
Réalisation de coupes de cartilage avec coloration
Mise en évidence par un test coloré du type de réserves dans une cellule, un tissu ou un organe Localisation des réserves dans une cellule, un tissu ou un organe (Angiospermes, Ulve)
Evaluation de la taille d’une structure microscopique (à partir de l’observation en MO, en utilisant une échelle) ou macroscopique
Coupe et montage de CT de racine (mycorhizée ou non), tige, limbe foliaire d’Angiospermes, pièces fertiles d’une fleur d’Angiosperme
Analyse de coupes transversales de racines, de tiges et de limbes foliaires d’Angiospermes : exemples d’exercices publiés
Etude morphologique de plantes entières, d’appareils végétatifs et/ou d’organes de réserve (rameau feuillé, bourgeon, CT de tronc, élodée, racines mycorhizées, oignon, radis, tubercule de pomme de terre, chou de Bruxelles, grain de maïs…)
Diagnose d’échantillons (la clef de détermination est fournie dans certains cas comme la pédofaune) ou d’organes (ex : organes végétaux à l’aide d’une clef fournie)
Analyse de clichés en MO, MET, MEB, avec fluorescence
Détermination florale (famille et genre, rarement espèce) à partir de flores fournies
Présentation comparative ou non de fruits, de graines et/ou de germinations (blé, haricot, maïs, kiwi, petit pois, érable, charme, clématite, benoîte, pissenlit, frêne, lentille, marron, châtaigne, tomate…).
Dissection florale Analyse de l’organisation d’une fleur en lien avec son mode de pollinisation
Exemples d’exercices publiés sur les fruits, les graines et les fleurs
Ouverture et présentation du cœur de Mammifère (mode opératoire fourni)
Ouverture et présentation de la moule
Exercice publié sur les branchies de moule
Panoplies thématiques d’appendices (respiratoires, prise de nourriture…) chez un crustacé (écrevisse, langoustine)
Prélèvement d’un parapode de Néréis
Panoplies thématiques d’appendices (céphaliques, thoraciques, locomoteurs…) chez le criquet
Extraction et montage des trachées du criquet
Présentation du criquet (tégument, morphologie, structures locomotrices…)
Morphologie de l’abeille en lien avec la pollinisation (données fournies)
Extraction de la vessie gazeuse de la truite (protocole fourni)
Extraction et présentation des branchies d’un téléostéen
Classement chronologique d’embryons d’Amphibiens à différents stades
Identification d’un stade de développement d’embryon d’Amphibien (à partir d’un échantillon, d’une lame)
Détermination des critères d’adaptation au milieu à partir d’un objet biologique
Détermination des critères suggérant l’optimisation des échanges à partir d’un objet biologique
Dessin d’observation à partir d’échantillons macroscopiques ou microscopiques
Pointer une structure, un tissu, un type de cellules au microscope ou à la loupe
Dégager une homologie ou une convergence évolutive (supports et échelles divers)
Identification d’une stratégie de reproduction Vidéomicroscopie : imagerie moléculaire, organismes phagotrophes, modalités de croissance etc
Familles de fleurs proposées Brassicacées, Boraginacées, Campanulacées, Caryophyllacées, Fabacées, Lamiacées, Poacées, Onagracées, Oxalidacées, Rosacées, Scrofulariacées.
Préparations microscopiques du commerce CT racines, tiges, limbes foliaires CT de structures reproductrices végétales (Angiospermes, Fucus, Filicophytes) CT et coupes sagittales d’embryons de Xénope Histologie animale : intestin, poumons, testicule, ovaire, vaisseaux sanguins, téguments (mammifères, téléostéens, arthropodes)…
Clichés de microscopie optique, électronique ou à fluorescence
Clichés de modèles moléculaires
Vidéos
Logiciels disponibles (liste non exhaustive) : Tableur (Calc, LibreOffice, Excel…), traitement de textes (Writer, LibreOffice), Regressi, PopG, Phylogène, Anagène, Rastop ou Pymol au choix du candidat, Populus, Regulpan, Virtual rat
Flores disponibles selon les sujets :
– [1] BONNIER Gaston, DE LAYENS Georges. Flore complète portative de la France, de la Suisse, de la Belgique. Belin ;
– [2] STREETER David et al. Guide Delachaux des fleurs de France et d’Europe. Delachaux et Niestlé ;
– [3] FITTER Richard, FITTER Alastair, FARRER Ann. Guide des graminées, carex, joncs et fougères. Delachaux et Niestlé.
– [4] THOMAS Régis, BUSTI David, Margarethe MAILLART. Petite flore de France, Belgique, Luxembourg et Suisse. Belin.